Мониторинг внутри
ДомДом > Новости > Мониторинг внутри

Мониторинг внутри

Dec 26, 2023

Научные отчеты, том 13, Номер статьи: 12529 (2023) Цитировать эту статью

50 доступов

1 Альтметрика

Подробности о метриках

Campylobacter jejuni и Campylobacter coli являются важными зоонозными патогенами пищевого происхождения и вызывают обеспокоенность в связи с растущей тенденцией к росту устойчивости к противомикробным препаратам. Долгосрочное эпиднадзорное исследование было проведено на животных разных возрастных групп на пяти фермах молочного скота с целью изучения разнообразия внутри фермы и динамики передачи резистентного Campylobacter с течением времени. Фенотип устойчивости циркулирующих изолятов (170 C. jejuni и 37 C. coli) определяли путем микроразведения в бульоне, а отобранные 56 изолятов секвенировали весь геном с использованием технологии секвенирования длинных фрагментов Oxford-Nanopore, что привело к полностью разрешенным и кольцевым геномам. (как хромосомы, так и плазмиды). C. jejuni был выделен на всех фермах, тогда как C. coli был выделен только на двух фермах, но уровень резистентности у C. coli был выше, чем у C. jejuni, и у телят, чем у взрослых животных. Некоторые генотипы (например, ST-48, gyrA_T86I/tet(O)/blaOXA-61 в ферме F1; ST-12000, aadE-Cc/tet(O)/blaOXA-489 в F4) сохранялись на протяжении всего исследования, в то время как другие проявлялись лишь спорадически. обнаружен. Приобретение внеклеточных генов от других изолятов и внутриклеточные мутационные события были идентифицированы как процессы, которые привели к появлению устойчивых генотипов, которые распространились внутри стада. Мониторинг с помощью секвенирования Oxford Nanopore Technologies помог расшифровать сложную молекулярную эпидемиологию, лежащую в основе распространения резистентного Campylobacter внутри фермы.

Кампилобактериоз является основной причиной бактериального гастроэнтерита человека в промышленно развитых странах, при этом основными возбудителями являются виды Campylobacter jejuni и Campylobacter coli. После домашней птицы крупный рогатый скот считается основным источником передачи Campylobacter человеку при употреблении зараженной пищи и/или воды или при прямом контакте с животными или их фекалиями1. Поскольку инфекции Campylobacter обычно проходят самостоятельно, антимикробная терапия показана только при системных и тяжелых инфекциях. Тем не менее, устойчивые к противомикробным препаратам кампилобактерии вызывают беспокойство, поскольку они ставят под угрозу варианты лечения инфекции. Фторхинолоны (ФХ) и тетрациклины, часто назначаемые в качестве эмпирической терапии диареи2, имеют пониженную эффективность из-за высокого уровня резистентности. Таким образом, макролиды стали препаратами выбора при лабораторно подтвержденных случаях тяжелого кампилобактериоза3,4.

Наши предыдущие результаты, основанные на перекрестных эпидемиологических исследованиях, проведенных в Стране Басков (север Испании), показали, что молочный скот представляет собой важный резервуар резистентных Campylobacter5,6 и что распространенность устойчивости к критически важным с медицинской точки зрения противомикробным препаратам, таким как FQ, увеличивается, тогда как устойчивость к макролидам остается низкой6,7. Приобретение определенных признаков устойчивости к противомикробным препаратам связано с повышенной приспособленностью бактерий (например, точечная мутация C257T в гене gyrA)8,9, тогда как другие приводят к снижению приспособленности (например, точечная мутация 2075G в гене 23S рРНК)10,11. В некоторой степени это может объяснить наблюдаемые в настоящее время высокие показатели устойчивости к FQ и низкие показатели устойчивости к макролидам у Campylobacter spp. от домашнего скота12.

В нескольких исследованиях сообщалось о вариабельности характера выделения Campylobacter с фекалиями, связанной с возрастом, а также о различиях в устойчивости отдельных генотипов внутри фермы 13,14,15. Однако динамика передачи устойчивых генотипов внутри стада до конца не выяснена, и все еще существуют пробелы в отношении распространения устойчивости к антибиотикам. Учитывая высокую корреляцию между выводами об устойчивости, основанными на фенотипе с использованием минимальных ингибирующих концентраций (MIC) и генотипе с использованием полногеномного секвенирования (WGS) у Campylobacter16, и эффективностью WGS для углубленной геномной характеристики бактерий17, здесь было проведено продольное исследование. на пяти фермах молочного скота в течение 16 месяцев, чтобы выяснить, могут ли определенные устойчивые генотипы быть более адаптированными к долгосрочной колонизации стада. Фенотипическое тестирование чувствительности к противомикробным препаратам и WGS были объединены для характеристики изолятов, выделенных от животных разных возрастных групп (телят, телок и лактирующих коров), собранных с течением времени. Для обеспечения полной сборки кольцевых бактериальных геномов и плазмид и получения точной информации о местонахождении генов устойчивости к противомикробным препаратам (ARG) было использовано секвенирование длинного считывания на основе технологии Oxford Nanopore (ONT). Понимание сложной эпидемиологии и динамики приобретения и распространения устойчивости к антибиотикам у C. jejuni и C. coli на фермах молочного скота поможет определить исходные данные для рекомендаций по методам управления на фермах.

 8). Reads were adapter-trimmed with Porechop v.0.2.4 with the default parameters37 (Wick 2017) and filtered by length and quality using Filtlong v.0.2.0 (https://github.com/rrwick/Filtlong) by discarding short reads (< 1000 bp) and keeping the best 90% of the remaining reads for further analyses (–min_length 1000 –keep_percent 90). Then, the resulting fastq reads were de novo assembled using Unicycler38. MLST profiles were determined from unassembled long-reads using Krocus39. New combinations of existing alleles along with representative isolate data were submitted to the Campylobacter MLST database pubMLST for new ST definition40. Genomes were processed to predict plasmid- and chromosome-derived contigs using PlasFlow (v.1.1) (Krawczyk et al.41), and small circular contigs were queried against blastn database (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) using default parameters and the lowest E-value was considered the best hit. BLASTn v.2.12.0+42 and ABRicate v.1.0.1 (T. Seemann, https://github.com/tseemann/abricate) were used to screen the draft genomes against ResFinder43 for the detection of acquired antimicrobial resistance genes and against VFDB_setB (full dataset) for virulence factors. Chromosomal point mutations associated with AMR were investigated by screening unassembled reads against the PointFinder database44 using Resfinder v.4.1.045. Databases used were all updated on 11/05/2022. Resfinder hits were filtered at 90% coverage and identity. Virulence genes were filtered at 90% coverage and 60% identity, and the pattern of presence/absence of these genes was used as a typing scheme for comparative genomic fingerprinting, supported with a dendrogram. The hierarchical clustering analysis for the dendrogram was performed with the unweighted pair-group method with arithmetic mean (UPGMA) based on the Jaccard distance matrix, using the function hclust (v.3.6.1) of the R statistical package v.3.6.3. Plasmid alignments were performed using MAUVE in progressive mode46 in Geneious Prime v. 2020.2.4 (https://www.geneious.com) software and GDR arrangements were graphically represented using SnapGene v.5.2.4 (http://www.snapgene.com/). Parsnp v1.7.447 along with the implemented RaxML v.8.2.1248 was used to perform core genome analyses and construct phylogenetic trees based on the chromosomal genomes to identify structural and point variations (SNPs), with defaults parameters and specifying -r ! parameter to randomly select the reference from the set of genomes analysed. The resulting trees were visualised with iTOL49./p>